人参皂苷Rh2含量测定方法及药理作用研究现状
2014-08-04 抗癌健康网
专注健康 关爱生命李学哲1 ,朴惠顺2 3
(1. 延边大学附属医院肿瘤内科;2. 延边大学药学院:吉林延吉133000)
[关键词] 人参皂甙类;抗肿瘤剂(中药) ;黑色素瘤;食管癌;前列腺肿瘤
[中图分类号] R 28515 [文献标识码] A [文章编号] 100021824 (2009) 0220153204
人参是五加科人参属植物,是传统的名贵药材.近年来,众多学者报道了人参单体的药理作用,特别是抗肿瘤作用,而研究发现人参中的抗肿瘤有效成分主要为人参多糖和人参皂苷. 随着对人参研究的深入,日本学者首次从红参(人参经蒸制、烘干后得到的制成品) 中发现了人参皂苷Rh2 . 这种皂苷是次生苷,是加入过程中由某些二醇组皂苷受热降解后生成的. 金凤燮等[1 ] 报道了酶转化法生产Rh2 等人参稀有皂苷,提取效果较传统方法提高了500~700倍,实现了工业化生产,为Rh2 的实际应用提供了可行性. 本文对人参皂苷Rh2 含量的测定方法及药理作用进行了综述.
1 Rh2 含量测定方法
蒋磊等[2 ] 报道,采用HPLC 法测定Rh2 准确含量,其测定条件中流动相为甲醇2乙腈2水为8 ∶8 ∶1 ,流动速度为1 mL/ min ,紫外检测波长为203 nm ,色谱柱为Thermo Hypersil ODS 2 (25010 mm ×415 mm , 510 μm) , 柱温为室温, 回收率高于99174 % ,RSD 小于1183 %,达到了药典规定. 在该色谱条件下,人参皂苷Rh2 的保留时间均为8~10
min ,并确定了人参皂苷Rh2 的R 型和S 型含量的高效液相色谱条件为Thermo Hyper sil ODS 2( 25010 mm ×415 mm , 510μm) 色谱柱,流动相为·153 ·© 1994-2011 China Academic Journal Electronic Publishing House. All rights reserved. http://www.cnki.netJournal of Medical Science Yanbian University J un. 2009 Vol. 32 No. 2乙腈2水为1 ∶1 , 柱温为室温, 流动速度为1 mL/ min ,进样量为10μL ,检测波长为203 nm ,理论塔板数按人参皂苷Rh2 峰计算应不低于3 700 ,分离度应大于115 ,得人参皂苷Rh2 中R 型与S 型之比为6 ∶4 ,在该色谱条件下,人参皂甙Rh2 的R 型保留时间均为17 min , S 型保留时间均为16 min ,R 型在S 型之后出峰. 冯林等[3 ] 报道,采用反相高效液相色谱法测定人参Rh2 的含量,测定条件中色谱柱为ODS2C18 (25010 mm ×416 mm ,51μm) ,流动相为乙腈2水(60 ∶40) ,流动速度为1 10 mL/ min ,检测波长为203 nm ,柱温为30 ℃,结果表明人参皂苷Rh2 质量浓度在80~240 mg/ L 范围内时进样量与峰面积呈良好的线性关系, r = 0 1999 2 ,平均回收率为99175 % (n = 6) . 顾轶等[4 ] 报道,采用LC2MS法测定Beagle 犬血浆中人参皂苷2 0 ( R)2Rh2 的含量, 检测条件色谱柱为Cosmosil ODS 柱(15010 mm ×210 mm i. d. ,5μm ,Nacalai Tesque ,日本) , 外加1 个C18 柱( Security Guard , Phenomenex ,美国) , 柱温为40 ℃, 流动相为乙腈及500μmol/ L 氯化铵水溶液, 流动速度为012 mL/ min , 梯度为乙腈40 mL/ L (0 min) , 乙腈60 mL/ L (0103 min) ,乙腈80 mL/ L (5100 min) ,乙腈95 mL/ L (5103 min) ,乙腈99 mL/ L (7100 min) ,
乙腈40 mL/ L (7150 min) , Pump Stop (9150 min) .质谱检测条件中离子化方式为电喷雾( ESI) ,检测模式为选择性离子检测(SIM) ,检测离子为负离子,20 (R)2 Rh2 的m/ z 为657135 ,洋地黄毒苷m/ z 为799155 ,雾化气流动速度为115 L/ min ,反吹气压力为1 MPa ,曲形脱溶剂装置温度为250 ℃,电压为-5 V ,加热块温度为200 ℃,离子源温度为250 ℃,电压为- 415 kV ,四级杆流电压为0 V ,交流电压为150 V ,检测电压为116 kV. 取具塞离心管数只,各加入Beagle 犬空白血浆1 mL ,精密加入不同质量浓度的20 (R)2Rh2 标准品溶液10μL ,分别制备成含20 ( R)2Rh2 质量浓度为015 , 11 0 , 510 , 1010 ,5010 ,10010 ,20010μg/ L的溶液,按上述血浆样品处理方法进行操作测定. 样品峰面积与内标峰面积的比值( Y) 及对血药质量浓度( c ) 作线性回归,得标准曲线回归方程( n = 6 ) 为Y = 01024 4 c + 01008 8( r = 01999 8 ) . 按上述方法测得20 ( R)2 Rh2 在Beagle 犬血浆中最低定量限为015μg/ L (信号噪声比大于10 ) , 相对标准偏差( RSD) 为1717 %(n = 6) ,符合FDA 对生物样本LLOQ 的要求. 方亮等[5 ] 报道,采用大孔吸附树脂法测定梅花参芪精中人参皂苷含量, 此法回收率为94158 % , RSD 为1154 %.
2 药理作用
211 抗肿瘤作用 人参皂苷的抗肿瘤作用已备受关注,特别是Rh2 对多种癌细胞的直接杀伤作用.已发现的作用机制有调节肿瘤细胞信号通路系统,影响细胞端粒酶的活性,阻断肿瘤细胞重要成分的合成与代谢,逆转肿瘤细胞的异常分化及耐药性,增强机体免疫力,提高抗肿瘤能力[6 ] .
21111 对黑色素B16细胞具有明显的分化诱导作用 体外实验证明,10 mg/ L 人参皂甙Rh2 可明显抑制黑色素B16细胞的生长,并呈现质量浓度依赖性,IC50 为411 mg/ L ;对B16 细胞有较强的分化诱导作用,表现为黑色素生成能力明显增强,形态向上皮样细胞分化,黑色素颗粒增多,生长变缓慢. 细胞动力学研究结果表明,Rh2 可使黑色素B16 细胞阻断在G1 期,亦提示Rh2 对B16细胞具有分化诱导作用[7 ] .
21112 C6 胶质瘤细胞的抑制增殖和诱导凋亡作用 2 ,4 ,8μmol/ L 人参皂苷Rh2 对C6 胶质瘤细胞均有抑制增殖作用, 且呈现出明显的量效关系;4μmol/ L人参皂苷Rh2 作用72 h 后,对C6 胶质瘤细胞诱导凋亡作用最为明显; 人参皂苷Rh2 作用后,处于G0 / G1 期细胞百分率明显下降, 而处于S 期细胞百分率则显著增高[8 ] .
21113 对食管癌Eca2109 细胞周期的影响 研究结果表明,人参皂苷Rh2 对Eca2109 细胞的生长具有抑制作用,并呈剂量及时间依赖性. 人参皂苷Rh2可将人食管癌Eca2109 细胞阻滞于G0 / G1 期,诱导肿瘤细胞分化, 并通过影响细胞周期调控因子cy2clinE ,CDK2 ,p 21WAF 1 基因的表达来抑制食管癌细胞的增殖[ 9 ] .
21114 对前列腺癌细胞株PC23 M 移行周期的影响 可使PC23 M 细胞增殖周期阻滞于G1 期,延缓肿瘤细胞增殖速度[10 ] .
21115 对人喉癌细胞株Hep22 抗增殖作用的影响
人参单体皂苷Rh2 可明显抑制Hep22 细胞的增殖,并呈剂量及时间依赖性. 用30 mg/ L 人参单体皂苷Rh2 处理细胞24 h 后,G期细胞由60109 %显著增加至68186 %,S 期细胞由18189 %明显减少至l2130 % ,G2 / M 期细胞及凋亡细胞无明显变化,细胞阻滞于G1 期[11 ] . 提示人参单体皂苷Rh2 对人喉癌细胞株Hep22 具有明显的抑制增殖作用,使细胞阻滞于G1 期.
21116 对人类乳腺癌细胞MCF27 增殖的抑制作用 人参皂苷Rh2 可显著抑制MCF27 细胞的生长,并呈剂量依赖关系,使细胞停留在G1 期[ 12 ] . 经Rh2处理细胞,其周期蛋白D 3 水平下降,而抑制Cdk 2活性的p 21WAF 1/ CIP 1 水平上升. Rh2 可显著降低磷酸化pRb 的水平和转录因子E 2 F21 的水平.
21117 对裸鼠体内人卵巢癌细胞肿瘤的生长抑制作用 在体外只需10~60μmol/ L 的Rh2 即可抑制多种人卵巢癌细胞的增殖,且IC50 剂量可诱导细胞凋亡[13 ] . Rh2 经口服给药较腹腔给药效果佳,经口服给药除具有增加N K 细胞活性的功效外,亦可诱导细胞凋亡.
21118 对Bel27404 细胞及人肝癌SMMC27721 细胞的作用 流式细胞术证实人参皂苷Rh2 对体外培养的Bel27404 细胞具有诱导凋亡的作用,细胞凋亡率(AR) 随人参皂苷Rh2 质量浓度的增高和作用时间的延长而升高[14215 ] ,当人参皂苷Rh2 质量浓度由1215 mg/ L 增高至5010 mg/ L 时, AR 则由1612 %升高至2715 % ,但人参皂苷Rh2 质量浓度由5010 mg/ L 增高至10010 mg/ L 时,AR 却未见相应升高. 人参皂苷Rh2 以时间依赖性和浓度依赖性抑制人肝癌SMMC27721 细胞的增殖,10 mg/ L 人参皂苷Rh2 作用6 d 后,抑制率达50 % ,而20 mg/ L人参皂苷Rh2 作用4 d 后抑制率近50 %. 10 ,20 mg/ L人参皂苷Rh2 作用于SMMC27721 细胞后,AFP 合成量明显下降,分泌量亦从6160 ±0130显著下降到2135 ±0106 ,γ2GT 及耐热型AL P 活性显著降低,而不耐热型AL P 活性及Alb 分泌量则显著升高.
21119 对白血病HL260 细胞凋亡的诱导作用
MTT 结果显示,用0~60μmol/ L 人参皂苷Rh2 分别处理HL260 细胞24 ,48 ,72 h 后发现, HL260 细胞的增殖明显受到抑制,且呈现浓度依赖性[16 ] . 人参皂苷Rh2 作用于HL260 细胞48 h 后, IC50 为25μmol/ L.
212 抑制肿瘤转移的作用 通过人参皂甙Rh2 对癌细胞转移影响的实验发现,人参皂甙Rh2 对小鼠B162BL6 黑色素瘤细胞转移株自发性肺部转移具有显著的抑制作用,25 ,52 mg/ kg Rh2 作用后小鼠的肺转移抑制率与对照组相比较有显著性差异,813 ,1616 mg/ kg Rh2 预先给药后,小鼠肺转移抑制率分别为44 % ,64 %[17 ] .
213 对免疫功能的影响 人参皂苷Rh2 注射液可提高荷瘤小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬功能及血清溶血素抗体的生成能力, 提高小鼠N K细胞杀伤活性和IL22 活性[18 ] .
214 抗过敏反应 人参皂苷Rh2 可明显抑制IgE诱导RBL ,2 H 3 细胞释放β2氨基己糖苷酶( IC50 为011 mmol/ L) 和小鼠被动皮肤过敏反应,且作用强于色甘酸钠.
215 抗耐药作用 顺铂为临床广谱抗肿瘤药物,可诱导多种肿瘤细胞凋亡[ 19 ] . 通过人参单体皂苷Rh2增强顺铂对PC23 M 致凋亡效应的研究发现,顺铂与Rh2 联合应用可提高顺铂对前列腺癌细胞的诱导凋亡效应[20 ] .
216 抗增生作用 在培养小鼠成纤维细胞过程中发现, 人参皂苷Rh2 对DNA 合成具有抑制作用[ 21 ] .
[参 考 文 献]
[1 ] 金凤燮,鱼红闪,卢明春,等. 人参皂苷实现工业化生产
[J ] . 家庭医学,2004 (9) :5.
[2 ] 蒋磊,卢明春,鱼红闪,等. 人参皂甙Rh2 产品质量检验及含量测定方法[J ] . 大连轻工业学院学报,2002 ,21(3) :197.
[3 ] 冯林,曾宪斌,胡现辉. 反相高效液相色谱法测定人参源胶囊中人参皂苷Rh2 的含量[J ] . 食品与药品,2008 ,10 (7) :35.
[4 ] 顾轶,王广基,孙建国,等. LC2 MS 法测定Beagle 犬血浆中人参皂苷20 (R)2Rh2 及其药代动力学研究[J ] . 中国临床药理学与治疗学,2006 ,11 (3) :256.
[5 ] 方亮,戈延茹,郭建鹏,等. 吸附树脂法测定梅花参芪精中人参皂甙的含量[J ] . 延边大学医学学报,1998 ,21(3) :165.
[6 ] 王占峰,罗毅男,洪新雨,等. 人参皂甙Rh2 抗肿瘤作用机制的研究[J ] . 北华大学学报:自然科学版,2005 ,6(1) :50.
[7 ] 夏丽,娟韩锐. 人参皂甙Rh2 体外对小鼠黑色素瘤细胞的分化诱导作用[J ] . 药学学报,1996 ,31 (10) :742.
[8 ] 李殿友,罗毅男,杨红,等. 人参皂苷Rh2 诱导C6 胶质瘤细胞的增殖抑制和诱导凋亡作用[J ] . 白求恩医科大学学报,2000 ,26 (4) :342.
[9 ] 李丽,齐凤英,刘俊茹,等. 人参皂苷Rh2 对食管癌细胞Eca2109 细胞周期的影响[J ] . 中国中药杂志,2005 ,30(20) :1617.
[10 ] 周桂花,孟艳,李杨,等. 人参单体皂苷Rh2 对前列腺癌细胞株PC23 M 细胞移行周期的影响[J ] . 中国病理生理杂志,2002 ,18 (7) :823.
[11 ] 于光久,康健,郭风. 人参皂苷Rh2 对人喉癌细胞株Hep22 抗增殖作用的研究[ J ] . 锦州医学院学报,2003 ,24 (6) :34.
[12 ] Oh M , Choi S , Chung H. Anti2proliferating effect s ofginsenoside Rh2 on MCF27 human breast cancer cells[J ] . I nt J Oncol ,1999 ,14 (5) :869.
[13 ] 张丽娟. 人参皂苷对卵巢癌细胞的影响[J ] . 国外医学中医药分册,1996 ,18 (4) :4.
[14 ] 樊光华,姜浩,欧文胜. 人参皂苷Rh2 诱导人肿癌Bel27404 细胞凋亡的作用[ J ] . 实用癌症杂志, 2003 , 18(1) :16.
[15 ] 曾小莉, 涂植光. 人参皂苷2Rh2 对人肝癌细胞SMMC27721 信号传导的影响[J ] . 中华肝脏病杂志,2004 ,12 (9) :565.
[16 ] 李罗丝,罗志勇,文斌,等. 人参皂苷Rh2 对白血病HL260 凋亡的诱导作用[ J ] . 中国现代医学杂志,2006 ,16 (21) :3215.
[17 ] 陶丽华,高峰,刘红岩,等. 20 (R)2人参皂苷Rh2 抗癌细胞转移实验研究[J ] . 人参研究,2002 ,14 (4) :17.
[18 ] 葛迎春,李晨燕,任慧君,等. 人参皂苷Rh2 注射液对荷肝癌( H22 ) 小鼠免疫功能的影响[J ] . 特产研究,2002 (3) :4.
[19 ] 元放,张宝泉,徐炎,等. 铂诱导的喉癌细胞凋亡及其对细胞周期的影响[J ] . 中华医学杂志,1999 ,79 (4) :298.
[20 ] 盂艳,周桂华,李扬,等. 人参单体皂甙Rh2 增强顺铂对PC23M 致凋亡效应的研究[J ] . 中国病理生理杂志,2003 ,19 (5) :689.
[ 21 ] Byun BH , Shin IL , Lee L. Antipholiferative effect s ofPanax ginseng ginseno2sides on DNA synthesis in cul2tured mouse fibroblast s[J ] . Koryo I nsam Hakhoechi ,1995 ,19 (2) :114.